Effects of different carbon sources on the bioflocs formataion, water quality and seeding effects of large yellow croaker (Larimichthys crocea) seedling water
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摘要:目的
生物絮团技术已被广泛应用于水产养殖，发挥了节水减排的作用，该技术目前已被应用于大黄鱼（Larimichthys crocea）人工育苗。本研究旨在探讨不同碳源对大黄鱼育苗水体生物絮团形成、水质及育苗效果的影响。
方法以葡萄糖、蔗糖和红糖为碳源并作为试验组，C/N均为15，对照组不加碳源，进行大黄鱼鱼苗培育试验。
结果经过30 d的培育，各试验组生物絮团沉降体积（BFV）和总固体颗粒悬浮物（TSS）含量极显著高于对照组（P<0.01），其中红糖组BFV值和TSS值显著高于葡萄糖组和蔗糖组；各试验组生物絮团粗蛋白质含量显著高于对照组（P<0.05），其中红糖组生物絮团粗蛋白质含量显著高于葡萄糖组和蔗糖组（P<0.05）；各试验组间氨氮、硝酸盐含量差异不显著（P>0.05），均极显著低于对照组（P<0.01）；各试验组亚硝酸盐含量均极显著低于对照组（P<0.01），其中红糖组亚硝酸盐含量显著低于葡萄糖组和蔗糖组（P<0.05）；各试验组pH值显著低于对照组（P<0.05），其中红糖组pH值最低，显著低于葡萄糖组和蔗糖组（P<0.05）；各试验组大黄鱼鱼苗绝对生长量和特定生长率均显著高于对照组（P<0.05），其中红糖组大黄鱼鱼苗绝对生长量最大，显著高于葡萄糖组和蔗糖组（P<0.05）；各试验组大黄鱼鱼苗存活率均显著高于对照组（P<0.05），其中红糖组存活率最高，显著高于葡萄糖组和蔗糖组（P<0.05）。
结论各试验组均获得了更好的养殖水质和养殖效果，其中以红糖作为碳源效果最好。本研究结果可为优化大黄鱼生物絮团育苗技术提供参考。
Abstract:ObjectiveThe bioflocs technology has been widely used in aquaculture, playing a role in water conservation and emission reduction. This technology is currently applied to artificial breeding of large yellow croaker (Larimichthys crocea). The study aims to discuss the effects of different carbon sources on the formation of bioflocs, water quality and seeding effects in the water of L. crocea fry cultivation.
MethodsGlucose, sucrose, and brown sugar were used as carbon sources. Three experiment groups with a carbon-nitrogen ratio (C/N) of 15 and one control group without carbon sources were set up for L. crocea fry cultivation experiments.
ResultsThe results showed that after 30 days of cultivation, the bioflocs volumn (BFV) and total suspende solide (TSS) values of each experiment group were significantly higher than those of the control group (P<0.01), while the BFV and TSS values of the brown sugar group were significantly higher than those of the glucose group and the sugar group. The crude proteins content of bioflocs in each experiment group was significantly higher than that in the control group (P<0.05), while the crude proteins content of bioflocs in the brown sugar group was significantly higher than that in the glucose group and the sugar group (P<0.05). The differences in ammonia nitrogen and nitrate content values among the experiment groups were not significant (P>0.05), but were significantly lower than those in the control group (P<0.01). The nitrite content values in each experiment group were significantly lower than those in the control group (P<0.01), and the nitrite content in the brown sugar group was significantly lower than that in the glucose group and the sugar group (P<0.05). The pH values of each experiment group were significantly lower than those of the control group (P<0.05), and the brown sugar group had the lowest pH value, which was significantly lower than the glucose group and the sugar group. The absolute growth rate and specific growth rate of L. crocea yellow croaker fry in each experiment group was significantly higher than that in the control group (P<0.05). The brown sugar group had the highest absolute growth rate of L. crocea fry, which was significantly higher than the glucose group and the sugar group (P<0.05). The survival rate of L. crocea fry in each experiment group was significantly higher than that in the control group (P<0.05), while the brown sugar group had the highest survival rate, which was significantly higher than the glucose group and sugar groups (P<0.05).
ConclusionThe experimental findings revealed that all test groups successfully enhanced aquaculture water quality and efficiency, with brown sugar emerging as the most effective carbon source. The results of this study could provide a reference for optimizing the bioflocs breeding technology of L. crocea.
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Keywords:
- Larimichthys crocea /
- carbon source /
- bioflocs /
- water quality
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生物絮团技术由以色列养殖专家 Avnimelech[1]于1999年首次提出，该技术主要是通过人为向养殖水体中添加有机碳物质，调节水体中的碳氮比（C/N），一方面利用异养菌吸收水体中无机氮；另一方面快速繁殖的异养菌能够絮凝成生物絮团，可以被养殖生物摄食，减少饵料的投入。该理论提出后，不同的碳源、C/N在水产养殖中的应用引起了国内外专家们的兴趣[2-6]，采用生物絮团技术可以实现水产养殖的少换水，甚至零换水[7-8]。Carb等[9]发现在罗非鱼养殖中使用生物絮团技术，能减少换水率14%以上。一些研究认为，不同碳源会影响生物絮团的结构和营养组成[10-11]，如Carb等[12]的研究表明，不同碳源会影响生物絮团蛋白质、脂肪、碳水化合物等营养成分的组成。在养殖水体中提供适合的碳源，对于生物絮团的形成和利用有着重要的作用[13]。
大黄鱼（Larimichthys crocea）属石首鱼科（Sciaenidae）、黄鱼属（Larimichthys），是中国较具特色区域性海水鱼类之一，主要分布在中国沿海，曾是“四大海产”之首。20世纪70年代，酷渔滥捕导致大黄鱼资源趋于枯竭，之后在中国水产科技人员的努力下，实现了全人工繁育和养殖，并逐渐发展成为中国最大规模的海水养殖鱼类[14]，年产量超25×104 t[15]，年育苗量超30亿尾。为了减少鱼苗下渔排（网箱）后的病害影响，对大黄鱼采用反季节育苗，即将正常的育苗时间由初夏提早到冬季或早春[16]，该方法可以使下渔排的大黄鱼鱼苗比正常水温下培育的多2个月的生长期，明显提高了大黄鱼鱼苗的生长速度和存活率，成为颇具特色的大黄鱼育苗技术，但也带来了升温育苗能耗较高和环境污染的问题。在大黄鱼育苗中采用生物絮团技术可以节约大量的育苗用水，且对于采用升温育苗技术的大黄鱼育苗来说，可以减少巨额的燃料成本和养殖排放。因此，本试验研究了不同碳源对大黄鱼育苗水体生物絮团形成、水质指标及育苗效果的影响，以期为进一步优化大黄鱼生物絮团育苗技术提供参考。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
试验在宁德市鼎诚水产有限公司育苗车间进行，鱼苗为18 d大黄鱼春苗，平均全长为（20.3±1.3）mm。试验使用的饲料为市售大黄鱼颗粒饲料，粗蛋白质含量为47.0%，粗脂肪含量为5.0%，粗纤维为2.0%，粗灰分为16.0%。试验用桶为容量2.0 m3的玻璃钢桶，实际养殖水体体积为1.6 m3。试验用碳源为葡萄糖（恒聚达牌分析纯）、蔗糖（科密欧牌分析纯）和红糖（甘芳牌纯甘蔗红糖）。福建省闽东水产研究所科技伦理审查委员会批准动物试验，批准编码为MDS-2025-1。
1.2 试验方法
1.2.1 养殖管理
设置以葡萄糖、蔗糖、红糖为碳源的3个试验组和不加碳源的对照组，按照试验饲料中蛋白质的含氮量，根据Avnimelech[1]的计算公式设置试验组C/N为15，每个组设置3个平行。每桶放养体质健康、活力良好的大黄鱼苗3 000尾，试验期间水温控制在24~25 ℃之间，充分曝气，使溶解氧浓度保持在5 mg/L以上，每天换水10%，试验周期为30 d。
1.2.2 生物絮团指标测定
每3 d取样测定1次生物絮团沉降体积（Bioflocs volume，BFV）。采用锥形沉淀漏斗取1 L水样，经过30 min沉淀，读取沉淀漏斗的沉积量数值。
总固体颗粒悬浮物（Total suspende solide，TSS）含量根据CJ/T 52—2004《城市污水 悬浮固体的测定 重量法》进行测定，取水样1 L，使用津腾牌微孔滤膜抽滤，在烘箱中105 ℃烘干2 h后称重。
1.2.3 水质指标的测定
每3 d取样测定1次水体中的氨氮、亚硝酸盐、硝酸盐、pH，其中pH采用 pH计（PSH-3E）测定；水体中的氨氮、亚硝酸盐氮和硝酸盐氮含量参照《水和废水监测分析法》（第四版）[17]进行测定。
1.2.4 生物絮团营养成分测定
试验结束后，利用200目筛绢网过滤收集水体中的生物絮团，置于烘箱中100 ℃烘干3 h，将干燥产物进行营养成分测定。粗蛋白质含量采用国家标准GB/T 2005.9—2010第一法进行测定；粗纤维含量采用国家标准GB/T 6434—2022过滤法进行测定；粗脂肪含量采用国家标准GB/T 6433—2006索氏抽提法进行测定。
1.2.5 大黄鱼苗生长、存活情况测定
试验结束后，每组取30尾大黄鱼测量全长，计算绝对增长量、特定生长率，并统计各组死亡情况，计算成活率。
绝对增长量（mm）=L2−L1 (1) 特定生长率（%）=（lnL2−lnL1）/t×100 (2) 成活率（%）=N2/N1×100 (3) 式（1）~式（2）中：L1、L2分别为初期和末期的全长；N1、N2分别为初期和末期大黄鱼鱼苗数量；t为试验周期。
1.3 统计分析
试验数据利用WPS Office表格进行处理，采用平均值±标准差表示。使用SPSS 19.0软件对试验数据进行单因素方差分析（One-way ANOVA），以P<0.05为差异显著，P<0.01为差异极显著。
2. 结果与分析
2.1 不同碳源对大黄鱼育苗水体生物絮团形成的影响
各试验组生物絮团BFV值随试验的开始快速上升，葡萄糖组和蔗糖组在18 d时BFV值达到最高；红糖组BFV值在21 d达到最高，为39.4 mL/L；之后，各试验组BFV值略微下降后再缓慢上升。在30 d时，红糖组BFV值为40.1 mL/L，显著高于其他试验组（P<0.05）。各试验组BFV值均极显著高于对照组（P<0.01）（图1）。
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图 1 不同碳源对大黄鱼育苗水体BFV值的影响Figure 1. Effect of different carbon sources on the values of BFV in different groups in L. crocea seedling water各组TSS的变化趋势与BFV基本相同，其中葡萄糖组和蔗糖组在18 d时TSS值达到最高；红糖组TSS值在21 d达到最高，为315.2 mg/L；之后，各试验组TSS值下降后基本趋于平稳。在30 d时，红糖组的TSS值为322.5 mg/L，显著高于其他2个试验组（P<0.05）。各试验组TSS值均极显著高于对照组（P<0.01）（图2）。
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图 2 不同碳源对大黄鱼育苗水体TSS值的影响Figure 2. Effect of different carbon sources on the values of TSS in different groups in L. crocea seedling water![]()
图 3 不同碳源对大黄鱼育苗水体氨氮含量的影响Figure 3. The influence of different carbon sources on the ammonia nitrogen content in L. crocea seedling water![]()
图 4 不同碳源对大黄鱼育苗水体亚硝酸盐含量的影响Figure 4. The influence of different carbon sources on nitrite content in L. crocea seedling water![]()
图 5 不同碳源对大黄鱼育苗水体硝酸盐含量的影响Figure 5. The influence of different carbon sources on nitrates content in L. crocea seedling water2.2 不同碳源对大黄鱼育苗水体水质指标的影响
2.2.1 对氨氮含量的影响
各试验组氨氮含量在9 d时均达到最高，之后开始下降；当18 d时，各试验组氨氮含量降低至1.2 mg/L左右；18 d后，对照组鱼苗摄食量开始明显低于试验组，损耗明显增加，其氨氮含量逐渐上升，各试验组氨氮含量在1.0~1.5 mg/L之间上下波动。在试验结束时，各试验组氨氮含量极显著低于对照组（P<0.01），但试验组之间差异不显著（P>0.05）（图3）。
2.2.2 对亚硝酸盐含量的影响
各组水体中亚硝酸盐含量均随试验的进行而上升，在18 d前，各试验组亚硝酸盐含量持续上升；在18 d后，红糖组亚硝酸盐含量下降；在21 d后，葡萄糖组和蔗糖组亚硝酸盐含量开始下降；在30 d时，红糖组亚硝酸盐含量显著低于其他2个试验组（P<0.05），蔗糖组和葡萄糖组间亚硝酸盐含量差异不显著（P>0.05）。对照组亚硝酸盐含量一直呈上升趋势，达到0.41 mg/L，极显著高于各试验组（P<0.01）（图4）。
2.2.3 对硝酸盐含量的影响
各组硝酸盐含量随试验的进行而上升，3个试验组上升较慢。在30 d时，各试验组硝酸盐含量均低于4 mg/L，试验组间差异不显著（P>0.05）；对照组硝酸盐含量持续上升，在30 d时达到最高，超过10 mg/L，极显著高于各试验组（P<0.01）（图5）。
2.2.4 不同碳源对大黄鱼育苗水体pH值的影响
试验组和对照组水体的pH值均随着培育时间的延长而降低，至30 d时，各试验组pH值均显著低于对照组（P<0.05），其中红糖组pH值最低，为6.88，显著低于葡萄糖组和蔗糖组（P<0.05）（表1）。
表 1 不同碳源对大黄鱼育苗水体pH值的影响Table 1. The impact of different carbon sources on the pH of L. crocea seedling water组别 Groups 培育时间/d Cultivation time 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 对照 Control 8.02±0.04a 7.98±0.03a 7.95±0.02a 7.88±0.03a 7.85±0.02a 7.53±0.01a 7.52±0.01a 7.31±0.02a 7.42±0.02a 7.21±0.02a 红糖 Brown sugar 8.01±0.04a 7.92±0.04b 7.81±0.02b 7.77±0.03b 7.75±0.03c 7.43±0.01b 7.21±0.09c 7.11±0.09b 7.02±0.08c 6.88±0.04c 蔗糖 Sucrose 7.99±0.12a 7.95±0.07a 7.83±0.06b 7.75±0.06b 7.76±0.03c 7.45±0.06b 7.28±0.04c 7.18±0.08b 7.09±0.10b 7.01±0.10b 葡萄糖 Glusose 7.98±0.11a 7.88±0.11b 7.85±0.09b 7.73±0.08b 7.71±0.03b 7.53±0.09a 7.38±0.10b 7.29±0.08a 7.12±0.08b 7.08±0.03b 2.3 不同碳源对大黄鱼育苗水体生物絮团营养成分的影响
在试验结束时，各试验组生物絮团中蛋白质含量显著高于对照组（P<0.05），其中红糖组蛋白质含量最高，达37.43%，显著高于葡萄糖组和蔗糖组（P<0.05）。各试验组脂肪含量也显著高于对照组（P<0.05），其中红糖组脂肪含量显著高于蔗糖组和葡萄糖组（P<0.05）（表2）。
表 2 各组生物絮团营养成分Table 2. Nutrient compositios of bioflocs in each group指标 Indices 组别 Groups 对照 Control 葡萄糖 Glusose 蔗糖 Sucrose 红糖 Brown sugar 粗蛋白质 Crude proteins 25.33±0.11C 34.70±0.45B 36.35±2.21B 37.43±1.92A 粗脂肪 Crude fats 6.33±0.18C 8.47±0.32B 8.38±0.13B 9.66±0.14A 粗灰分 Crude ash 18.16±0.34A 16.15±0.14B 16.42±0.13B 14.37±0.14C 水分 Water 50.17±0.55A 38.67±0.84B 40.10±0.72B 38.54±0.56B 注：同一指标中不同大写字母表示组间差异显著（P<0.05），相同则差异不显著（P>0.05）。表3同此。 Notes: Values in the same index with different capital letters mean there are significant differences among groups (P<0.05)，while the same letters mean no significant differences . It’s the same as table 3. 2.4 不同碳源对大黄鱼鱼苗培育效果的影响
经过30 d培育，各试验组鱼苗的绝对增长量、特定生长率和存活率均显著高于对照组（P<0.05），其中红糖组鱼苗的绝对增长量、特定生长率显著高于其他2个试验组（P<0.05）（表3）。
表 3 不同碳源对大黄鱼鱼苗生长的影响Table 3. Effects of different carbon sources on the growth of L. crocea fry指标 Indices 组别 Groups 对照 Control 葡萄糖 Glusose 蔗糖 Sucrose 红糖 Brown sugar 初全长/mm Initial total length 20.3±1.3A 20.3±1.3A 20.3±1.3A 20.3±1.3A 末全长/mm Final total length 43.3±2.8B 46.3±3.1B 47.6±3.2B 50.7±2.9A 绝对增长量/mm Absolute growth 23.1±1.2C 26.0±1.3B 27.3±1.1B 30.4±1.9A 特定生长率/% Specific growth rate 2.52±0.02C 2.75±0.02B 2.84±0.13B 3.05±0.09A 存活率/% Survial rate 55.53±2.12C 72.17±1.88B 73.23±1.97B 78.73±1.75A 3. 讨论
3.1 不同碳源对大黄鱼育苗水体生物絮团形成的影响
适量添加碳源使养殖水体达到一定的C/N，可以有效促进异养菌吸收水体中的氮盐转化成菌蛋白[1]，进而起到降低水体营养盐指标的作用。本试验中，各试验组水体中BFV值和TSS值在18 d或21 d时达到高点，再略微下降后上升趋于缓慢，说明添加的碳源有效地促进了异养菌的繁殖，进而形成了明显多于对照组的生物絮团量，并且生物絮团量达到1个高点后开始下降，也符合细菌的生长曲线[18]。卢炳国等[19]在草鱼（Ctenopharyngodon idella）生物絮团养殖试验中，发现生物絮团量在28 d达到最高后开始下降；杨章武等[20]在凡纳滨对虾（Litopenaeus vammamei）生物絮团育苗试验中，发现生物絮团量也呈先上升后下降的变化，这些均与本研究的结果相近。
不同的碳源对生物絮团形成的影响也有区别，本研究中红糖组生物絮团BFV和TSS的最高值均出现在21 d，迟于葡萄糖组和蔗糖组的18 d；30 d后红糖组生物絮团的BFV和TSS值显著高于葡萄糖组和蔗糖组。杨章武等[20]认为蔗糖比葡萄糖、淀粉更易于形成生物絮团。张哲等[2]在凡纳滨对虾虾苗标粗试验中也得出蔗糖能获得更多的生物絮团沉积量的结论。本研究中使用的葡萄糖和蔗糖分别属于单糖和二糖，红糖的主要成分也是蔗糖，均易溶于水而被异养菌吸收使用[21]，因此3个试验组生物絮团的量均很快超过了对照组。而红糖组生物絮团的量高于其他2个试验组，可能是因为其含有少量的维生素和铁等微量元素，这些微量元素对异养菌的繁殖有一定的促进作用。
额外添加碳源能够提高生物絮团的蛋白质含量[22]，如徐武杰[7]发现在凡纳滨对虾养殖系统中，越高C/N值的养殖系统的生物絮团蛋白质含量越高；Azim等[23]在尼罗罗非鱼（Oreochromis niloticus）养殖系统中培育的生物絮团的蛋白质含量可达38.41%；Ballester等[24]在圣保罗对虾（Farfantepenaeus paulensis）养殖系统获得的生物絮团的平均蛋白质含量为30.4%。本研究中，试验组生物絮团的蛋白质含量在34.7%~37.43%之间，在同等C/N值的情况下，红糖组生物絮团中蛋白含量最高，造成这种差别的原因可能是不同碳源培育的生物絮团的胞外聚合物有差异[25]，生物絮团菌群从不同碳源中获得的益处也存在差异。
3.2 不同碳源对大黄鱼育苗水体水质指标的影响
养殖生物代谢产生的氨氮是水体中氮源的重要来源，水中氨氮含量升高对养殖生物的毒性会不断增强[26-28]，在碳源充足的情况下，异养菌可有效利用水体中的氮源转化为自身的菌蛋白[29]。本研究中，各试验组的氨氮含量在9 d时达到一个高峰后快速下降，此后一直处于较低水平。卢炳国等[19]对草鱼养殖池水质的研究中，其氨氮的高峰期出现在第28天；王广军等[30]对杂交鳢（Channa argus♂×C. maculata♀）的研究中，氨氮的峰值出现在第5天，这些与本研究氨氮含量的变化趋势相似。养殖水体中生物絮团的成熟需要一个过程，随着水体中异养菌的快速繁殖，吸收氨氮的能力不断增加，当达到1个平衡点后，就可以有效地转化吸收水体中的氨氮，使其保持在较低水平。在不同的研究中，氨氮的峰值出现在不同的时间，可能是不同试验的水温和饲料蛋白质含量等差异造成的。本研究中，亚硝酸盐的峰值出现在18、21 d，红糖组峰值要早于其他2个试验组，最终水体亚硝酸盐含量也显著低于其他2个试验组，推测是转化亚硝酸盐的菌群繁殖速度低于直接利用氨氮的菌群，而红糖更有利于该菌群的繁殖，因此红糖组获得了更好的亚硝酸盐处理效果。试验组中大量的氨氮被异养菌利用，因此其硝酸盐的积累也明显低于对照组。
养殖水体受饵料投喂和养殖生物排泄等影响，pH值下降[31-32]。本研究中各试验组的pH值均显著低于对照组，而以红糖组pH值最低，结合红糖组在生物絮团生成量和亚硝酸盐吸收上的优势，推测试验组大黄鱼鱼苗生长更快，同时异养菌繁殖活动更旺盛，从而造成了其水体pH值降低。
3.3 不同碳源对大黄鱼鱼苗培育效果的影响
水产生物的健康生长需要优良的水环境。高密度养殖水体容易快速积累氨氮，进而产生亚硝酸盐，影响养殖生物的健康。水体中的氨氮会侵袭养殖生物的黏膜，特别是鳃表皮和肠黏膜，造成养殖生物中毒[33]。氨氮含量升高会抑制养殖生物的摄食[34-35]，破坏肝肾器官，甚至造成死亡[36]。亚硝酸盐中，NO−2可以将鱼血液血红蛋白的亚铁血红素亚基中的亚铁氧化，形成没有携氧能力的高铁血红蛋白，降低血液载氧能力[37-38]。在水产养殖水体中，采用生物絮团技术可以有效降低水体营养盐的含量[2,19,30]，进而促进养殖生物的生长[39-40]。本研究中，试验组均获得了显著高于对照组的存活率和生长速度，与张哲等[2]的研究结果一致。在相同C/N值的情况下，不同碳源获得的养殖效果也有所差别。本研究中，红糖组大黄鱼苗生长速度和存活率显著高于其他2个试验组，分析其原因，一方面是红糖组在降低亚硝酸上的效果优于其他组，亚硝酸盐含量最早达到峰值且最终值低于其他组；另一方面，红糖组形成的生物絮团蛋白质含量也优于其他组。此外，生物絮团中的菌蛋白还可以为养殖生物提供饵料[31,41]。生物絮团的粒径较小，悬浮于水中，相对沉性颗粒饲料有较强的适口性。各试验组大黄鱼苗的生长速度均优于对照组，其中生物絮团蛋白质含量最高的红糖组获得了最快的生长速度，说明生物絮团很可能部分替代了大黄鱼鱼苗的饲料，并且对其生长有益。
4. 结论
在大黄鱼育苗水体中添加碳源可以有效降低水体中的营养盐含量。不同的碳源在促进生物絮团的形成和吸收营养盐上的效果有所不同，红糖作为碳源获得了更优的亚硝酸盐吸收效果和更高的生物絮团蛋白质含量，且鱼苗生长速度最快，存活率也最高，因此红糖是大黄鱼生物絮团育苗技术中推荐使用的碳源。
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图 1 不同碳源对大黄鱼育苗水体BFV值的影响
注：同一培育时间下不同小写字母表示组间差异显著（P<0.05），相同则差异不显著（P>0.05）。图2~图5和表1同此。
Figure 1. Effect of different carbon sources on the values of BFV in different groups in L. crocea seedling water
Notes: Different lowercase letters in the same incubation time indicate there are significant differences among groups (P<0.05)，while the same letters indicate no significant differences (P>0.05) . It’s the same as figure 2 - figure 5 and table 1.
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图 2 不同碳源对大黄鱼育苗水体TSS值的影响
Figure 2. Effect of different carbon sources on the values of TSS in different groups in L. crocea seedling water
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图 3 不同碳源对大黄鱼育苗水体氨氮含量的影响
Figure 3. The influence of different carbon sources on the ammonia nitrogen content in L. crocea seedling water
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图 4 不同碳源对大黄鱼育苗水体亚硝酸盐含量的影响
Figure 4. The influence of different carbon sources on nitrite content in L. crocea seedling water
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图 5 不同碳源对大黄鱼育苗水体硝酸盐含量的影响
Figure 5. The influence of different carbon sources on nitrates content in L. crocea seedling water
表 1 不同碳源对大黄鱼育苗水体pH值的影响
Table 1 The impact of different carbon sources on the pH of L. crocea seedling water
组别 Groups 培育时间/d Cultivation time 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 对照 Control 8.02±0.04a 7.98±0.03a 7.95±0.02a 7.88±0.03a 7.85±0.02a 7.53±0.01a 7.52±0.01a 7.31±0.02a 7.42±0.02a 7.21±0.02a 红糖 Brown sugar 8.01±0.04a 7.92±0.04b 7.81±0.02b 7.77±0.03b 7.75±0.03c 7.43±0.01b 7.21±0.09c 7.11±0.09b 7.02±0.08c 6.88±0.04c 蔗糖 Sucrose 7.99±0.12a 7.95±0.07a 7.83±0.06b 7.75±0.06b 7.76±0.03c 7.45±0.06b 7.28±0.04c 7.18±0.08b 7.09±0.10b 7.01±0.10b 葡萄糖 Glusose 7.98±0.11a 7.88±0.11b 7.85±0.09b 7.73±0.08b 7.71±0.03b 7.53±0.09a 7.38±0.10b 7.29±0.08a 7.12±0.08b 7.08±0.03b 
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表 2 各组生物絮团营养成分
Table 2 Nutrient compositios of bioflocs in each group
指标 Indices 组别 Groups 对照 Control 葡萄糖 Glusose 蔗糖 Sucrose 红糖 Brown sugar 粗蛋白质 Crude proteins 25.33±0.11C 34.70±0.45B 36.35±2.21B 37.43±1.92A 粗脂肪 Crude fats 6.33±0.18C 8.47±0.32B 8.38±0.13B 9.66±0.14A 粗灰分 Crude ash 18.16±0.34A 16.15±0.14B 16.42±0.13B 14.37±0.14C 水分 Water 50.17±0.55A 38.67±0.84B 40.10±0.72B 38.54±0.56B 注：同一指标中不同大写字母表示组间差异显著（P<0.05），相同则差异不显著（P>0.05）。表3同此。 Notes: Values in the same index with different capital letters mean there are significant differences among groups (P<0.05)，while the same letters mean no significant differences . It’s the same as table 3.
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表 3 不同碳源对大黄鱼鱼苗生长的影响
Table 3 Effects of different carbon sources on the growth of L. crocea fry
指标 Indices 组别 Groups 对照 Control 葡萄糖 Glusose 蔗糖 Sucrose 红糖 Brown sugar 初全长/mm Initial total length 20.3±1.3A 20.3±1.3A 20.3±1.3A 20.3±1.3A 末全长/mm Final total length 43.3±2.8B 46.3±3.1B 47.6±3.2B 50.7±2.9A 绝对增长量/mm Absolute growth 23.1±1.2C 26.0±1.3B 27.3±1.1B 30.4±1.9A 特定生长率/% Specific growth rate 2.52±0.02C 2.75±0.02B 2.84±0.13B 3.05±0.09A 存活率/% Survial rate 55.53±2.12C 72.17±1.88B 73.23±1.97B 78.73±1.75A
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